УДК 636:612.579/619:616.995.121.56
DOI: 10.36871/vet.san.hyg.ecol.202602020

Авторы

Николай Дмитриевич Шамаев,
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К. И. Скрябина, Москва, Российская Федерация; Казанская государственная медицинская академия – филиал ФГБОУ ДПО РМАНПО Минздрава России, Казань, Республика Татарстан, Российская Федерация
Сергей Сергеевич Бурдуковский,
Бурятская государственная сельскохозяйственная академия имени В. Р. Филиппова, Улан-Удэ, Республика Бурятия, Российская Федерация
Малик Нилович Мукминов,
Казанская государственная медицинская академия – филиал ФГБОУ ДПО РМАНПО Минздрава России, Казань, Республика Татарстан, Российская Федерация
Казанский (Приволжский) Федеральный университет, Казань, Республика Татарстан, Российская Федерация

Аннотация

При эхинококкозе легких происходит изменение локального микробиома в очаге поражения. Идентификация специфических микробных маркеров непосредственно в легочной ткани может дать ключ к пониманию механизмов хронизации воспаления. Цель данного исследования – анализ особенностей бактериальных изолятов из легочной ткани при эхинококкозе. Объектом исследования являлся изюбрь (Cervus canadensis). Добыча произведена в осенний сезон охоты 2025 г. Материал получен в процессе послеубойного осмотра туши и внутренних органов. Идентификацию культур микроорганизмов, выделенных из посевов исследуемых образцов внутри и снаружи эхинококкозного пузыря, проводили методом МALDI-TOF масс-спектрометрии. Присутствие бактерий Carnobacterium divergens (p = 0,039) и Leclercia adecarboxylata (p = 0,027) в легочных смывах изюбря с альвеолярным эхинококкозом не является случайной контаминацией. Согласно линейному регрессионному анализу, они с высокой долей вероятности могут представлять собой вторичную бактериальную инфекцию, заменившую Acinetobacter johnsonii и Streptococcus gallolyticus ssp. gallolyticus на фоне глубокой иммуносупрессии, индуцированной паразитом.

Ключевые слова

альвеолярный эхинококкоз, Cervus canadensis, Echinococcus multilocularis, взаимоотношения «паразит–хозяин», микробиота

Список литературы

  1. Cao D., Chen Y., Liu J. et al. Investigation of the Alterations in the Gut Microbiota and Intestinal Mucosa in Mice Infected with Echinococcus multilocularis // Acta Parasitologica. 2025. Vol. 70. No. 6. P. 211. DOI: 10.1007/s11686- 025-01166-0.
  2. Streliaeva A. V., Abdiev F. T., Mamysheva N. et al. Transformation of the fungus Paecilomyces variotii and the causes of host cell lysis at the boundary with a fungal mycelium-containing Echinococcus capsule // Med. Parazitol. (Mosk.). 2011. (1):20-23.
  3. Мурадова Э. В., Худаярова Г. Н. Гистологические исследования оболочек эхинококка и местная тканевая реакция со стороны организма-носителя в зависимости от наличия патогенной микрофлоры и инфицирования в эхинококковых кистах // Вестник врача. 2020. Т. 1, № 2 (94). С. 57–61. DOI: 10.38095/2181-466X-2020942- 56-60.
  4. Still Brooks K. M. Pasteurellosis of Sheep and Goats [Электронный ресурс] // Merck Veterinary Manual. – 2022. – URL: https://www.merckvetmanual.com/generalized-conditions/pasteurellosis-of-sheep-and-goats/pasteurellosis-of-sheep-and-goats (дата обращения: 15.02.2026).
  5. Васильева И. В. Streptococcus parauberis [Электронный ресурс] // Микробиология: студенческий портал МГУ им. М. В. Ломоносова. URL: https://kodomo.fbb.msu.ru/~shoqri/term1/bacteria.html (дата обращения: 15.02.2026).
  6. Acinetobacter johnsonii [Электронный ресурс] // ScienceDirect. URL: https://www.sciencedirect.com/topics/agricultural-and-biological-sciences/acinetobacter-johnsonii (дата обращения: 15.02.2026).
  7. Smati M., Palacios C., Cohen Y. et al. Carnobacterium divergens Bacteremia in woman // Emerging Infectious Diseases. 2015. Vol. 21. No. 6. P. 1081-1082. DOI: 10.3201/eid2106.141799.
  8. Identification of Streptococcus gallolyticus subsp. gallolyticus (Biotype I) Competence-Stimulating Peptide Pheromone [Электронный ресурс] // OmicsDI. 2018. URL: https://www.omicsdi.org/dataset/biostudies-literature/S-EPMC6018355 (дата обращения: 15.02.2026).
  9. Shamaev N. D., Shuralev E. A., Nikitin O. V. et al. Prevalence of Toxoplasma gondii infection among small mammals in Tatarstan, Russian Federation // Scientific Reports. 2021. Vol. 11.No. 1. DOI 10.1038/s41598-021-01582-y. EDN UBGGQQ.L
  10. Shamaev N. D., Fedotova A. Y., Galiullina A. V. et al. Prevalence and risk factors of toxoplasma-like and intestinal parasites in cats from urbanized area of Tatarstan, Russia // Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 2018. Vol. 9. No. 6. P. 465-471. EDN DZPZQJ.
  11. Shamaev N. D., Shuralev E. A., Petrov S. V. et al. Seroprevalence and B1 gene genotyping of Toxoplasma gondii in farmed European mink in the Republic of Tatarstan, Russia // Parasitology International. 2020. Vol. 76. P. 102067. DOI 10.1016/j.parint.2020.102067. EDN TOFJHJ.
  12. Cusick J., Alsaadi H., Bhusal R.P. et al. Spatially divergent metabolic impact of experimental toxoplasmosis: immunological and microbial correlates // mSystems. 2025. Vol. 10. No. 12. P. e01126-25. DOI: 10.1128/msystems.01126-25.