УДК 619:616.34
DOI: 10.36871/vet.zoo.bio.202511203

Авторы

Сергей Владимирович Лаптев,
Марина Викторова Селина,
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К. И. Скрябина, Москва, Россия

Аннотация

Микробиоценоз родополовых путей коров включает в себя семейства Enterobacteriaceae, Streptococcaceae, Staphilococcaceae, Pseudomonadaceae, Enterococcaceae, Bacillaceae, с доминированием Escherichia и Klebsiella. После родов повреждение слизистой подавляет рост Lаctobаcillus и Bаcterium bifidum, активизируя условно-патогенную микрофлору и Candida. Развитие эндометрита связано с изменениями микробиома матки. Клинический эндометрит характеризуется гнойными выделениями, а субклинический эндометрит нет. Субклинический эндометрит может быть связан с иммунными нарушениями. При клиническом эндометрите доминирует условно-патогенная микрофлора, выявляют Staphilococcus, Streptococcus, Escherichia, Proteus и др., а также Aspergillus fumigatus и Candida. У здоровых коров преобладают сапрофитные бактерии. Trueperella, Fusobacterium и др. ассоциированы с клиническим эндометритом. Межвидовой синергизм имеет решающее значение для установления клинической инфекции заболеваний матки. Типичные маточные патогены реже встречаются в здоровой матке.

Ключевые слова

микробиота, клинический эндометрит, субклинический эндометрит, коровы, матка, инфекция, заболевание

Список литературы

  1. Авдеенко В., Родин Н., Музартаев Р. и др. Контаминация микроорганизмами половых органов у коров при акушерских и гинекологических заболеваниях // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2019. № 12. С. 54–58. EDN ONLMFB.
  2. Войтенко Л. Г., Лапина Т. И., Головань И. А. и др. Влияние микробного фактора на возникновение скрытого эндометрита у коров // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2015. № 1. С. 23–25. EDN TMMBQT.
  3. Войтенко Л., Шилин Д., Лапина Т. и др. Влияние микробного фактора на возникновение скрытого эндометрита у коров // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2016. № 9. С. 42–45. EDN YXNJXN.
  4. Гаде Р. Р., Симонов П. Г., Федотов С. В. Видовой состав микрофлоры матки и вымени у коров при острых послеродовых эндометритах и маститах // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2023. № 3. С. 26–33. EDN DMVJCC.
  5. Гончаров В. Д., Селина М. В. Экономическая безопасность России. М.: Московский государственный университет технологий и управления имени К. Г. Разумовского, 2012. 175 с. EDN QWLRMV.
  6. Капралов Д. В., Красочко П. А. Сравнительные исследования микробиоты половых органов у коров в норме и при патологии репродуктивных органов, // Актуальные проблемы инфекционной патологии животных и пути их решения: сборник трудов. Витебск: Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины, 2023. С. 198–201. EDN WPDBHH.
  7. Коновалова М. В., Воробцова И. Н., Васильев В. В. и др. Патогенетические особенности транспортировки кишечной микрофлоры в матку после родов // International Journal of Medicine and Psychology. 2021. Т. 4. № 1. С. 154–159. EDN GTKLOL.
  8. Лаптев С. В., Запунная С. Д. Методы изучения микробиома и коррекции нарушения микробиоты животных // Арктика – территория стратегических научных исследований: сборник трудов II Арктического конгресса. Якутск: Северо-Восточный федеральный университет имени М. К. Аммосова, 2024. С. 182–190. EDN NOMMBE.
  9. Лаптев С. В., Пименов Н. В., Пермякова К. Ю. и др. К вопросу о роли доминирующей микробиоты в выборе пути развития патогенеза септических заболеваний // Сборник трудов 12-й международной межвузовской конференции по клинической ветеринарии в формате Partners. М.: Сельскохозяйственные технологии, 2022. С. 454–463. EDN ERPNUQ.
  10. Лаптев С. В., Татарникова Н. А., Сидорова К. А. и др. Патогенез и маркеры сепсиса // Известия сельскохозяйственной науки Тавриды. 2020. № 35 (198). С. 182– 197. EDN OBFCRQ.
  11. Локтева А. С., Плешакова В. И. Характеристика микробиоты родильного отделения для крупного рогатого скота // Современные тенденции развития ветеринарной науки и практики: сборник трудов. Омск: Омский государственный аграрный университет имени П. А. Столыпина, 2022. С. 295–299. EDN DPMNWQ. 1
  12. Луцай В. И., Солошенко Н. Ю., Нефедов А. М. и др. Микробный пейзаж при остром гнойно-катаральном послеродовом эндометрите у коров // Аграрная наука. 2024. № 3. С. 66–71. EDN HVAKMI.
  13. Малик Н. И., Малик Е. В., Маленкова Л. А. и др. Изоляция, идентификация и пробиотические свойства влагалищных изолятов молочнокислых бактерий здоровых сухостойных коров // Аграрная наука. 2021. № 10. С. 27–31. EDN VZPPWE.
  14. Михалев В. И., Нежданов А. Г., Ефанова Л. И. и др. Микробиота влагалища коров при задержке внутриутробного развития эмбриона и плода // Ветеринария. 2015. № 4. С. 44–47. EDN TOLYVF.
  15. Николаев С. В. Характеристика микрофлоры влагалища крупного рогатого скота в различные периоды // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2024. Т. 2. № 12. С. 59–66. EDN GTHXXV.
  16. Новиков В. В., Басова Н. Ю., Новикова Е. Н. Микробный фон влагалища коров, проблемных по воспроизводству // Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2021. Т. 10. № 1. С. 56–59. EDN KBJBZD.
  17. Новикова Е. Н., Гаврилов Б. В., Седашев А. П. и др. Исследование микробиоценоза родополовых путей коров в животноводческом хозяйстве Краснодарского края // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2024. № 10. С. 77–87. EDN PACZSK.
  18. Новикова Е. Н., Коба И. С., Гаврилов Б. В. и др. Микробиоценоз родополовых путей коров // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2024. № 7. С. 93–99. EDN ICILLC.
  19. Паршин П. А., Востроилова Г. А., Бригадиров Ю. Н. и др. Микробный пейзаж половых путей здоровых коров с различным сроком стельности // Международный вестник ветеринарии. 2023. № 4. С. 431–437. EDN MMEWRE.
  20. Пименов Н. В., Лаптев С. В., Марзанова С. Н. и др. Катионные белки гранулоцитов в прогностике гнойно-септических патологий в ветеринарной пропедевтике генерализации бактериозов. М.: ИД «Научная библиотека», 2023. С. 172. EDN EGXUSG.
  21. Полегаева К. С., Родин М. И., Седов А. В. и др. Видовой состав микроорганизмов при воспалении слизистой оболочки матки у коров // Вестник АГАТУ. 2023. № 2 (10). С. 11–20. EDN EHJIZH.
  22. Сазонова Е. А., Авраменко М. В., Чекрышева В. В. Влияние стерилизации на микробиом матки и влагалища кошек // Ветеринария и кормление. 2023. № 6. С. 56– 59. EDN ZMVFCC.
  23. Семиволос А. М., Агольцов В. А., Брюханова А. А. и др. Микрофлора содержимого матки коров при остром послеродовом гнойно-катаральном эндометрите и ее чувствительность к антибактериальным препаратам // Аграрный научный журнал. 2021. № 7. С. 71–73. EDN ZOWSMG.
  24. Сухинин А. А., Краснопеев А. Ю., Горшкова А. С. и др. Генетическое разнообразие бактерий кишечника крупного рогатого скота, выявленное с помощью высокопроизводительного секвенирования // Международный вестник ветеринарии. 2022. №3. С. 27–36. EDN FZGAUK
  25. Тресницкий С. Н., Музартаев Р. Э., Ляшенко Н. Ю. и др. Степень контаминации возбудителями аспирата из полости матки у коров-родильниц с осложненным послеродовым периодом // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2018. № 4. С. 41–48. EDN RSQYAR.
  26. Фирсов Г. М. Анализ вагинального секрета при послеродовом метрите у симментальских коров // Основные тенденции развития АПК в современной России: сборник трудов. п. Персиановский: Донской государственный аграрный университет, 2024. С. 172–176. EDN KDZGDZ.
  27. Хамидуллин Р. Р., Тремасова А. М., Идиятов И. И. и др. Микробиоценоз половых путей у коров при остром послеродовом эндометрите // Ветеринарный врач. 2023. № 1. С. 64–69. DOI: 10.33632/1998- 698X_2023_1_64. EDN KYPNXO.
  28. Чекункова Ю. А., Беляева Н. Ю., Ашенбреннер А. И. и др. Влияние фометрина на микрофлору матки коров при послеродовом эндометрите // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2017. № 12 (158). С. 125–130. EDN ZVHZYH.
  29. Basbas C. et al. Unveiling the Microbiome during post-partum uterine infection: a deep shotgun sequencing approach to characterize the dairy cow uterine microbiome // Anim. Microbiome. 2023. Vol. 5. Pp. 1–18.
  30. Çömlekcioğlu U. et al. Uterine microbial ecology and disease in cattle: a review // Theriogenology. 2024. Jan 1. Vol. 213. Pp. 66–78. https://doi.org/10.1016/J.THERIOGENOLOGY.2023.09.016.
  31. Gabler C., Drillich M. A review of the ongoing discussion about definition, diagnosis and pathomechanism of subclinical endometritis in dairy cows // Theriogenology. 2017. Vol. 94. Pp. 21–30.
  32. Gilbert R. O. et al. Prevalence of endometritis and its effects on reproductive performance of dairy cows // Theriogenology. 2005. Vol. 64. Pp. 1879–1888.
  33. Jeon S. J. et al. Blood as a route of transmission of uterine pathogens from the gut to the uterus in cows // Microbiome. 2017. Vol. 5. P. 109.
  34. Jeon S. J., Galvão K. N. An advanced Understanding of uterine microbial ecology associated with metritis in dairy cows // Genomics Inf. 2018. Vol. 16. P. e21.
  35. Karstrup C. C. et al. Presence and localization of bacteria in the bovine endometrium postpartum using fluorescence in situ hybridization // Theriogenology. 2017. Vol. 92. Pp. 167–175.
  36. Kasimanickam R. et al. Endometrial cytology and ultrasonography for the detection of subclinical endometritis in postpartum dairy cows // Theriogenology. 2004. Vol. 62. Pp. 9–23.
  37. Lin L. et al. The gastrointestinal microbiome in dairy cattle is constrained by the deterministic driver of the region and the modified effect of diet // Microbiome. 2023. Vol. 11. Pp. 1–21.
  38. Lobb D. A. et al. Bovine polymorphonuclear neutrophil-mediated phagocytosis and an Immunoglobulin G2 protease produced by Porphyromonas levii // Can. J. Vet. Res. 1999. Vol. 63. P. 113.
  39. Lu K. et al. Serum metabolomics in a Helicobacter hepaticus mouse model of inflammatory bowel disease reveal important changes in the microbiome, serum peptides, and intermediary metabolism // J. Proteome Res. 2012. Vol. 11. Pp. 4916–4926.
  40. Mallick H. et al. Multivariable association discovery in population-scale meta-omics studies // PLoS Comput. Biol. 2021. Vol. 17. P. e1009442.
  41. Nyabinwa P. et al. Influence of endometritis on milk yield of zero-grazed dairy cows on smallholder farms in Rwanda // Vet. Anim. Sci. 2020. Vol. 10. P. 100149.
  42. Ong C. T. et al. Interrogating the bovine reproductive tract metagenomes using culture-independent approaches: a systematic review // Anim. Microbiome. 2021. Vol. 3. Pp. 1–12.
  43. Pascottini O. B. et al. Dynamics of uterine microbiota in postpartum dairy cows with clinical or subclinical endometritis // Sci. Reports. 2020. Vol. 10. Pp. 1–11.
  44. Pascottini O. B. et al. Genesis of clinical and subclinical endometritis in dairy cows // Reproduction. 2023. Vol. 166. Рр. 15–24.
  45. Petersen C., Round J. L. Defining dysbiosis and its influence on host immunity and disease // Cell. Microbiol. 2014. Vol. 16. Pp. 1024–1033.
  46. Ramakodi M. P. Effect of amplicon sequencing depth in environmental microbiome research // Curr. Microbiol. 2021. Vol. 78. Pp. 1026–1033.
  47. Rotstein O. D. Interactions between leukocytes and anaerobic bacteria in polymicrobial surgical infections // Clin. Infect. Dis. 1993. Vol. 16. Supplement 4. Рр. 190–194.
  48. Rzewuska M. et al. Pathogenicity and virulence of Trueperella pyogenes: a review // Int. J. Mol. Sci. 2019. Vol. 20. P. 2737.
  49. Senosy W. S., Izaike Y., Osawa T. Influences of metabolic traits on subclinical endometritis at different intervals postpartum in high milking cows // Reprod. Domest. Anim. 2012. Vol. 47. Рр. 666–674.
  50. Sheldon I. M., Cronin J. G., Bromfield J. J. Tolerance and innate immunity shape the development of postpartum uterine disease and the impact of endometritis in dairy cattle // Annu Rev Anim Biosci. 2019. Feb 15. Vol. 7. Pp. 361–384. https://doi.org/101146/ annurev-animal-020518-115227.
  51. Sims D. et al. Sequencing depth and coverage: key considerations in genomic analyses // Nat. Rev. Genet. 2014. Vol. 15. P. 2.
  52. Tardón D. C. et al. Relationships among indicators of metabolism, mammary health and the microbiomes of periparturient Holstein cows // Animals. 2022. Vol. 12. P. 3.
  53. Wang M. L. et al. Uterine microbiota of dairy cows with clinical and subclinical endometritis // Front. Microbiol. 2018. Vol. 401841.
  54. Zhang Y. et al. Effect of estradiol after bacterial infection on the Wnt/β-catenin pathway in bovine endometrium epithelial cells and organoids // Theriogenology. 2024. Vol. 219. Pp. 75–85.