УДК 619: 616.98:578
DOI: 10.36871/vet.zoo.bio.202511307

Авторы

Кристина Николаевна Царькова,
Алексей Дмитриевич Забережный,
Олеся Анатольевна Богомолова,
Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности, Москва, Россия
Анастасия Сергеевна Курындина,
Российский биотехнологический университет, Москва, Россия
Ирина Викторовна Полякова,
Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К. И. Скрябина и Я. Р. Коваленко Российской академии наук, Москва, Россия

Аннотация

Вирусная лейкемии кошек (FeLV) представляет собой одну из наиболее значимых проблем современной ветеринарной медицины мелких домашних животных. Несмотря на достижения в диагностике и профилактике, заболевание продолжает характеризоваться высоким уровнем летальности и диагностическими сложностями, особенно при поражении костного мозга. Отсутствие единых алгоритмов диагностики и прогнозирования течения инфекции обуславливает необходимость дальнейшего изучения патогенеза заболевания. Цель данного исследования – провести ретроспективный анализ гематологических нарушений у кошек с прогрессирующей FeLV, верифицированной методом ПЦР костного мозга, оценить диагностическую значимость комбинированного исследования аспирата ККМ на провирусную ДНК и вирусную РНК. Работа проводилась в период с 2021 по июнь 2024 г. в лаборатории иммунологии ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности» и на базе ветеринарной клиники «Зоодоктор» (г. Щелково, Московская область). Из 560 поступивших в ветеринарную клинику и обследованных животных диагноз на вирусную лейкемию был поставлен 143 животным. Настоящая работа представляет собой ретроспективный анализ серии клинических случаев. Критерием для включения в исследование послужило стационарное обследование в ветеринарной клинике «Зоодоктор» с последующим лабораторным подтверждением прогрессирующей вирусной лейкемии кошек. Из первоначальной группы животных, обследованных по подозрению на FeLV, была сформирована конечная группа, включившая 8 кошек. Отбор в данную группу проводился на основании комплексной диагностики, верифицировавшей активную форму инфекции с поражением костного мозга, что и определило их в качестве объектов настоящего исследования. Всем животным проводили комплексное обследование, включавшее в себя клинический осмотр, общий клинический анализ крови с определением гематологических показателей в динамике, пункцию красного костного мозга под общей анестезией. Для молекулярно-генетической диагностики использовали ПЦР аспирата ККМ на провирусную ДНК и вирусную РНК FeLV. На основании комплексного анализа клинических и лабораторных данных выделены четыре патогенетических варианта течения инфекции: миелопролиферативный вариант (37,5 % случаев), характеризующийся развитием лейкозов с гиперлейкоцитозом; миелосупрессивный вариант (25 % случаев), проявляющийся панцитопенией и признаками миелодисплазии; диссоциированная форма (12,5 % случаев) с различным статусом вирусной репликации в периферической крови и костном мозге; субклиническое носительство (25 % случаев) с минимальными изменениями периферической крови.
Комбинированное ПЦР-исследование аспирата ККМ на провирусную ДНК и вирусную РНК является высокоинформативным диагностическим методом, позволяющим не только верифицировать прогрессирующую FeLV, но и определить патогенетический вариант течения заболевания. Полученные данные имеют практическое значение для разработки дифференцированных алгоритмов диагностики, мониторинга и прогнозирования течения FeLV у кошек.

Ключевые слова

вирус лейкоза кошек, FeLV, костный мозг, ПЦР, гематологические заболевания, миелопролиферативный синдром, миелосупрессия, провирусная ДНК, вирусная РНК, диагностические алгоритмы

Список литературы

  1. Cattori V. et al. Real-time PCR investigation of feline leukemia virus proviral and viral RNA loads in leukocyte subsets // Vet Immunol Immunopathol. 2008. Vol. 123 (1–2). Pp. 124–128.
  2. Gleich S., Hartmann K. Hematology and serum biochemistry of feline leukemia virus (FeLV)- and feline immunodeficiency virus (FIV)-infected cats // J Vet Intern Med. 2009. Vol. 23 (3). Pp. 552–558.
  3. Hartmann K. Clinical aspects of feline retroviruses: a review // Viruses. 2012. Vol. 4 (11). Pp. 2684–2710.
  4. Hofmann-Lehmann R. et al. How molecular methods change our views of FeLV infection and vaccination // Vet Immunol Immunopathol. 2008. Vol. 123 (1–2). Pp. 119–123.
  5. Jackson M. L. et al. Feline leukemia virus-associated erythroid hypoplasia and granulocytic hyperplasia in a cat // Can Vet J. 1996. Vol. 39 (5). Pp. 536–545.
  6. Little S. et al. AAFP feline retrovirus testing and management guidelines // J Feline Med Surg. 2020. Vol. 22 (1). Pp. 5–30.
  7. Stutzer B. et al. Role of latent feline leukemia virus infection in nonregenerative cytopenias of cats // J Vet Intern Med. 2010. Vol. 24 (1). Pp. 192–197.
  8. Tandon R. et al. Quantitation of feline leukaemia virus viral and proviral loads by TaqMan real-time polymerase chain reaction // J Virol Methods. 2005. Vol. 130 (1– 2). Pp. 124–132.
  9. Torres A. N. et al. Re-examination of feline leukemia virus: host relationships using real-time PCR // Virology. 2005. Vol. 332 (1). Pp. 272–283.