УДК 636.32/.38
DOI: 10.36871/vet.zoo.bio.202601215

Авторы

Саманта Александра Миранда Калеро,
Саида Нурбиевна Марзанова,
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К. И. Скрябина, Москва, Россия

Аннотация

Овцеводство в Никарагуа является фундаментальной опорой продовольственной безопасности и экономики выживания во многих сельских общинах. Несмотря на свою социально-экономическую важность, генетические ресурсы овец в стране являются одними из наименее изученных на молекулярном уровне в Мезоамерике, что представляет собой критический пробел в знаниях. Данный обзор направлен на анализ доступной литературы о текущем состоянии знаний о генетическом разнообразии овец в Никарагуа, с особым акцентом на необходимость их оценки и характеристики с помощью биотехнологических инструментов, позволяющих оценить их адаптивный потенциал, продуктивность и устойчивость к болезням. Отсутствие генетической характеристики популяций, адаптированных к тропическим условиям, ограничивает разработку эффективных стратегий сохранения, генетического улучшения, оздоровления и управления здоровьем. Этот информационный вакуум является особенно критическим в контексте устойчивости и восприимчивости к биопатогенам (эндопаразиты, бактерии, вирусы), распространенным во влажных тропиках. В обзоре исследуется потенциал молекулярных маркеров, в частности микросателлитов (STR), для выяснения популяционной структуры, оценки уровней инбридинга и разнообразия, идентификации потенциально связанных с устойчивостью аллелей и закладки основ для программ селекции с помощью маркеров. Делается вывод, что генетическая характеристика никарагуанских пород овец является не только научным приоритетом, но и непременным условием для реализации устойчивых стратегий, направленных на повышение продуктивности, климатической адаптации и устойчивости к болезням, одновременно обеспечивая сохранение уникального и незаменимого генетического наследия. Наконец, определяются основные пробелы в знаниях и предлагаются конкретные будущие направления для исследований в стране.

Ключевые слова

овцы, породы, генетические ресурсы, микросателлиты, биоразнообразие, устойчивость к болезням

Список литературы

  1. Кленовицкий П. М., Моисейкина Л. Г., Марзанов Н. С. Цитогенетика сельскохозяйственных животных: монография. Э.: Джангар. 1999. 141 c.
  2. Марзанов Н. С., Насибов М. Г., Марзанова Л. К. и др. Генетические маркеры в теории и практике разведения овец // М.: ИЦ «ПИОНЕР», 2010. 184 c.
  3. Марзанов Н. С., Амерханов Х. А., Марзанова Л. К. и др. Эволюция и генная технология в тонкорунном овцеводстве, М.: ФГБНУ «Росинформагротех» 2012. 174 c.
  4. Марзанов Н. С., Комкова Е. А., Малюченко О. П. и др. Характеристика аллелофонда романовской породы овец по различным типам генетических маркеров // Проблемы биологии продуктивных животных 2015. № C (2). C. 23–40.
  5. Марзанов Н. С., Лушников В. П., Марзанова Л. К. и др. Классификатор для оценки аллелофонда овец романовской породы по различным типам генетических маркеров. Саратов: ИЦ «Наука», 2017. 35 c.
  6. Марзанов Н. С., Девришов Д. А. Марзанова С. Н. и др. Оценка овец романовской породы по различным типам иммунологических и генетических маркеров. М.: ООО «Академия Принт», 2022. 154 с. DOI: 10.18720/SPBPU/2/z21-42.
  7. Марзанова С. Н., Фатахов К. Ф., Девришов Д. А. и др. Связь локусов главного комплекса гистосовместимости у овец (OLA) с резистентностью и восприимчивостью их к паразитозам // Ветеринария. 2024. № 7. С. 28–34. DOI 10.30896/0042- 4846.2024.27.7.28-33.
  8. Марзанова С. Н., Девришов Д. А., Жучков В. А. и др. Сравнение аллелей гена DRB1 двух популяций овец романовской породы методами рестрикционного картирования и секвенирования // Биотехнология. 2025. Т. 41. № 1. С. 21–33. DOI 10.56304/S0234275825010090.
  9. Марзанова С. Н., Девришов Д. А., Фатахов К. Ф., Марзанов Н. С. Состояние исследований главного комплекса гистосовместимости (OLA) у овец // Аграрная наука. 2025. № 1. С. 93–99. DOI 10.32634/0869-8155-2025-390-01-93-99.
  10. Al-Atiyat R. M. The power of 28 microsatellite markers for parentage testing in sheep // Electronic Journal of Biotechnology. 2015. Vol.18. № 2. Pp. 116–121. DOI: 10.1016/j. ejbt.2015.01.001
  11. Banco Central de Nicaragua (BCN) Cuadros de Anuario de Estadísticas Macroeconómicas 2024-Sector Real // https://www.bcn.gob. ni/cuadros-de-anuario-de-estadisticas-macroeconomicas. Дата обращения: 22.10.2025
  12. Banco Mundial Población rural (% de la población total) – Nicaragua. URL https://datos.bancomundial.org/indicador/SP.RUR. TOTL.ZS?locations=NI.
  13. Campos E., Cuéllar J., Omar S. et al. The genetic diversity and phylogeography of Mexican domestic sheep // Small Ruminant Research. 2020. Vol.187. Pp. 106-109. DOI:10.1016/j.smallrumres.2020.106109
  14. Cunming Y., Li B., Mengting Z. et al. Identification of microsatellites and their effect on economic traits of Texel × Kazakh sheep // Frontiers in Veterinary Science. 2025. Vol. 12. P. 1583625. DOI: 10.3389/ fvets.2025.1583625
  15. Ding W., Lu Y., Xu B., Chen P., Li A., Jian F., Yu G., Huang S. Meat of Sheep: Insights into Mutton Evaluation, Nutritive Value, Influential Factors, and Interventions. //Agriculture. 2024. Vol. 14. No. 7. P. 1060. https:// doi.org/10.3390/agriculture14071060
  16. Dodgson J. B., Cheng H. H., Okimoto R. DNA marker technology: a revolution in animal genetics // Poultry Science. 1997. Vol. 76. (8). Pp. 1108–1114. doi: 10.1093/ ps/76.8.1108.
  17. Duarte N. Conferencia: Mejores razas de ovinos y caprinos en condiciones del corredor seco 2022. URL: https://www.youtube. com/watch?v=AJkgZcUa_Cc
  18. Dubeuf J-P., Boyazoglu J., An international panorama of goat selection and breeds// Livestock Science. Vol. 120. Iss. 3. 2009. Pp. 225–231. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2008.07.005.
  19. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO) Recursos geneticos animales en America Latina : ganado criollo y especies de altura / Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), ed. B. Müller-Haye, J. Gelman, Spanish Edition-е, FAO, 1981. 170 p. URL:https://openknowledge.fao.org/server/api/core/bitstreams/8c7a1835-1ebc-4b11- a3ef-ba960f87928a/content
  20. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO) Molecular genetic characterization of animal genetic resources Rome:, 2011.C. 1–100. URL: https://openknowledge.fao.org/handle/20.500.14283/ i2413e
  21. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO) The second report on the state of the world’s animal genetic resources for food and agriculture / Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), ed. B. D. Scherf, D. Pilling, Rome: Commission on Genetic Resources for Food and Agriculture, Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2015. 606 p.
  22. URL: https://www.absfocalpoint.nl/upload_mm/a/f/0/d342062d-3034-41b7-8df9- aa0b0e63dfc7_The%20second%20report%20 on%20the%20State%20of%20the%20 World’s%20Animal%20Genetic%20Resources%20for%20Food%20and%20Agriculture%20%282015%29.pdf
  23. Glowatzki-Mullis M. -L., Muntwyler J., Bäumle E. et al. Genetic diversity of Swiss sheep breeds in the focus of conservation research // Journal of Animal Breeding and Genetics. 2009. Vol. 126 (2). Pp. 164–175.
  24. doi: 10.1111/j.1439-0388.2008.00768.x.
  25. Gobierno de Reconciliación y Unidad Nacional (GRUN) Estrategia Nacional de Promoción de la Agricultura Familiar para la Seguridad Alimentaria y Nutricional 2019– 2021. Managua, 2019.
  26. Gobierno de Reconciliación y Unidad Nacional (GRUN) Plan Nacional de Lucha Contra la Pobreza y para el Desarrollo Humano 2022–2026. Managua, 2021.
  27. Hajializadeh V. R., Rafat S. A., Firouzamandi M. et al. Use of Microsatellite Polymorphisms in Ovar-DRB1 Gene for Identifying Genetic Resistance in Fat-Tailed Ghezel Sheep to Gastrointestinal Nematodes // Iranian Journal of Applied Animal Science. 2016. Vol. 6 (4). Pp. 879–886.
  28. McManus C., Pimentel D., Junqueira V. S. et al. The importance of sheep genetics and diversity: a bibliometric review // Trop Anim Health Prod. 2025. Jun. 11; 57(5): 261. doi: 10.1007/s11250-025-04503-7.
  29. Mcmanus C., Paiva S. R., Olegário De Araújo R. Genetics and breeding of sheep in Brazil // Revista Brasileira de Zootecnia. 2010. Vol. 39. Pp. 236–246. (supl. especial) DOI: 10.1590/S1516-35982010001300026
  30. Molotsi A. H., Dube B., Cloete S. W. P. The Current Status of Indigenous Ovine Genetic Resources in Southern Africa and Future Sustainable Utilisation to Improve Livelihoods // Diversity. 2020. Vol. 12 (1). P. 14. DOI: https://doi.org/10.3390/d12010014
  31. Naser Ridha S. Investigating the genetic basis of disease resistance in animal populations // World Journal of Advanced Research and Reviews. 2023. Vol 18 (01). Pp. 073–079. DOI: https://doi.org/10.30574/ wjarr.2023.18.1.0443
  32. Ocampo R., Cardona H., Martínez R. Genetic diversity of Colombian sheep by microsatellite markers // Chilean journal of agricultural research. 2016. Vol. 76 (01). Pp. 40–47. DOI: 10.4067/S0718-58392016000100006
  33. Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y Agricultura (FAO) Ganadería sostenible en América Latina y el Caribe. URL: https://www.fao.org/americas/regional-initiatives/top-pages/sustainable-livestock-farming-in-latin-america-and-the-caribbean/los-rostros-de-la-agricultura-familiar-mesoamericana/es.
  34. Paim T. do P., Santos C.A. dos S., Faria Danielle A. et al. Genomic selection signatures in Brazilian sheep breeds reared in a tropical environment // Livestock Science. 2022. Vol. 258 (6):104865. DOI: 10.1016/j. livsci.2022.104865
  35. Sáenz A. Ovinos y caprinos. Nicaragua, Managua, 2007. URL: https://cenida.una.edu. ni/textos/nl01s127o.pdf
  36. Sassi-Zaidy Y. Ben, Mohamed-Brahmi A., Nouairia G. et al. Genetic Variability and Population Structure of the Tunisian Sicilo-Sarde Dairy Sheep Breed Inferred from Microsatellites Analysis // Genes. 2022. Vol. 13 (2) P. 304. DOI: https://doi.org/10.3390/ genes13020304
  37. Soares R. A. N., Nogueira J. F., Neto J. B. de M. et al. PSI-9 Molecular characterization of Berganês sheep, a locally adapted ecotype from Brazilian semi-arid region // Journal of Animal Science. 2019. Suppl 3 (97). Pp. 288– 289. DOI: 10.1093/jas/skz258.583
  38. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers // Nucleic Acids Research. 1989. Vol. 17 (16). Pp. 6463–6471. doi: 10.1093/nar/17.16.6463.
  39. Torres-Hernández G., Maldonado-Jáquez J.A., Granados-Rivera L.D. et al.. Status quo of genetic improvement in local goats: a review // Archives Animal Breeding. 2022. Vol. 65 (2). Pp. 207–221. DOI: 10.5194/aab-65-207-2022
  40. Whannou H. R. V., Spanoghe M., Dayo G-K. et al. Genetic diversity assessment of the indigenous goat population of Benin using microsatellite markers // Front. Genet., 2023. Vol. 14. P. 1079048. doi: 10.3389/ fgene.2023.1079048