УДК 619:578:599.735.3
DOI: 10.36871/vet.zoo.bio.202603110

Авторы

Данила Юрьевич Горохов,
Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К. И. Скрябина и Я. Р. Коваленко Российской академии наук (ВИЭВ), Москва, Россия

Аннотация

В статье представлены результаты исследований биоматериалов от оленей 6 видов семейства Cervidae на вирусы, вызывающие вспышки заболеваний у крупного рогатого скота: BVDV, BPI3V, коронавирус, ротавирус, BoHV-1, LSDV. У пятнистых оленей выявляли геном BVDV – в 3,2 %; BPI3V – 3,2; коронавирус – 12,9; ротавирус – 19,3; BoHV-1 – 16,1; LSDV – 3,2 % случаев. У сибирской косули выявляли геном BVDV и BoHV-1 в 11,1 % случаев. У лосей выявляли геном BoHV-1 в 7,1 % случаев. У ланей, благородных и северных оленей геномов целевых вирусов не обнаружено. Из лимфатических узлов пятнистого оленя выделен изолят BoHV-1. Специфические антитела к коронавирусу обнаружены у ланей в 75 %; у благородных оленей – в 14,3; у северных оленей – в 3,4 и 14,3 % случаев. Антитела к ротавирусу выявлены в сыворотке крови ланей – в 75,0 % проб; благородных оленей – 57,1; северных оленей – 10,1 и 14,3 % проб. Серопревалентность к BoHV-1 у ланей составила 5,0 %; у лосей – 33; у северных оленей – 6,8 %. Полученные результаты свидетельствуют об ограниченном распространении вирусов крупного рогатого скота среди оленей.

Ключевые слова

BVDV, BPI3V, коронавирус, ротавирус, BoHV-1, LSDV, олени, ПЦР РВ, РН, ИФА

Список литературы

  1. Иванюк В. П., Лаптев С. В., Нурлыгая‑ нова Г. А. Эзофагостомоз свиней и эффективность лечебных мероприятий // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2025. № 1. С. 136–145. DOI: 10.36871/vet. zoo.bio.202501115. EDN SAANYY.
  2. Наврузшоева Г. Ш., Девришов Д. А., Пи‑ менов Н. В. Иммуногенные свойства отечественных вакцин против сибирской язвы // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2022. № 2. С. 45–51. DOI: 10.36871/ vet.zoo.bio.202202006. EDN MBPFPW.
  3. Цепилова И. И., Шемякова С. А., Нико‑ лаева Е. А. Эндопаразитофауна сельскохозяйственных жвачных животных в регионах Северного Кавказа // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2022. № 5. С. 89–95. DOI: 10.36871/vet.zoo. bio.202205011. EDN SMXCBG.
  4. Cantu A. J., Ortega-S A., Mosqueda J. et al. Prevalence of Infectious Agents in Free-ranging White-tailed Deer in Northeastern Mexico // Journal of Wildlife Diseases. 2008. Vol. 44 (4). Pp. 1002–1007.
  5. Fernández-Aguilar X., López-Olvera J. R., Marco I. et al. Pestivirus in alpine wild ruminants and sympatric livestock from the Cantabrian Mountains, Spain // Vet. Rec. 2016. Vol. 178. P. 586. DOI: 10.1136/ vr.103577.
  6. Frolich K., Li H., Muller-Doblies U. Serosurvey for antibodies to malignant catarrhal fever-associated viruses in free-living and captive cervids in Germany // Journal of Wildlife Diseases. 1998. Vol. 34. Pp. 777–782.
  7. Gulyukin A. M., Shulyak A. F., Velic‑ hko G. N. et al. Pathogenic viruses, fungi and cocci detected in wild animals of different habitats International // Journal of Veterinary Science. 2025. Pp. 648–653.
  8. Ingebrigtsen K. D., Ludwig J. R., Mcclur‑ kin A. W. Occurrence of antibodies to the etiologic agent of infectious bovine rhinotracheitis, parainfluenza 3, leptospirosis and brucellosis in white-tailed deer in Minnesota // Journal of Wildlife Diseases. 1986. Vol. 22. Pp. 83–86.
  9. Kálmán D., Egyed L. PCR detection of bovine herpesviruses from nonbovine ruminants in hungary // Journal of Wildlife Diseases. 2005. Vol. 41 (3). Pp. 482–488.
  10. Lage A. P., Castro R. S., Melo M. I. et al. Prevalence of antibodies to bluetongue, bovine herpesvirus 1 and bovine viral diarrhea/mucosal disease viruses in water buffaloes in Minas Gerais State, Brazil // Revue d’Elevage et de Medecine Veterinaire de Pays Tropicaux. 1996. Vol. 49. Pp. 195–197.
  11. Marco I., Lopez-Olvera J. R., Rosell R. et al. Severe outbreak of disease in the southern chamois (Rupicapra pyrenaica) associated with border disease virus infection // Vet. Microbiol. 2007. Vol. 120. Pp. 33–41.
  12. Ricci S., Bartolini S., Federico M. et al. Genotyping of Pestivirus A (Bovine Viral Diarrhea Virus 1) detected in faeces and in other specimens of domestic and wild ruminants at the wildlife-livestock interface // Veterinary Microbiology. 2019. Vol. 235. Pp. 180–187
  13. Ridpath J. F., Neill J. D. Challenges in identifying and determining the impacts of infection with Pestiviruses on the herd health of free ranging cervid populations // Front. Microbiol. 2016. Vol. 7. P. 921.
  14. Van Campen H., Ridpath J., Willam E. S. et al. Experimental infection of deer with bovine viral diarrhea virus // Journal of Wildlife Diseases. 1997. Vol. 33. Pp. 567–573.
  15. Vilček Š., Nettleton P. F. Pestiviruses in wild animals // Vet. Microbiol. 2006. Vol. 116. Pp. 1–12.
  16. Yatsentyuk S. P., Pchelnikov A. V., Safi‑ na E. R. et al. The first study on the occurrence of bovine herpesviruses in the wild fauna of the Moscow region, Russia // Vet World. 2022. Aug. Vol. 15 (8). Pp. 2052–2058.